Biologia Celular

Código:

MV112

Sigla:

BC

Áreas Científicas
Classificação	Área Científica
OFICIAL	Ciências Básicas

Ocorrência: 2024/2025 - 1S (de 16-09-2024 a 10-01-2025)

Ativa?	Sim
Unidade Responsável:	Microscopia
Curso/CE Responsável:	Mestrado Integrado em Medicina Veterinária

Ciclos de Estudo/Cursos

Sigla	Nº de Estudantes	Plano de Estudos	Anos Curriculares	Créditos UCN	Créditos ECTS	Horas de Contacto	Horas Totais
MIMV	73	Plano Oficial em Vigor	1	-	4	56	108

Língua de trabalho

Português
Obs.: Português / suitable for English-speaking students

Objetivos

OBJETIVOS:

-PRETENDE-SE QUE OS ALUNOS ADQUIRAM CONCEITOS BÁSICOS DA ESTRUTURA E FUNCIONAMENTO DA CÉLULA, E SUA RELAÇÃO COM A FISIOLOGIA, IDADE, ADAPTAÇÃO E PATOLOGIA ASSOCIADA.

Mais especificamente:

-Noções específicas da estrutura e função dos diferentes componentes celulares.

-Saber utilizar em autonomia o microscópio ótico (MO).

-Saber utilizar o microscópio de fluorescência (MF).

-Obter formação básica em microscopia eletrónica de transmissão (TEM).

-Obter formação básica no processamento para MO, histoquímica, imunocitoquímica, imunohistoquímica e TEM.

-Saber identificar as estruturas celulares ao MO e TEM.

Resultados de aprendizagem e competências

RESULTADOS E COMPETÊNCIAS DE APRENDIZAGEM:

No final do semestre, o estudante deverá possuir os seguintes conhecimentos, competências e atitudes:

-Noções gerais e específicas da estrutura e função dos diferentes componentes celulares.

-Saber identificar todos os organelos e estruturas celulares em microscopia ótica e eletrónica de transmissão (TEM).

-Saber utilizar em autonomia o microscópio ótico.

-Noções básicas de como utilizar o microscópio de fluorescência.

-Saber realizar e interpretar diferentes preparações de material a fresco e processado para microscopia ótica.

-Noções gerais sobre diferentes técnicas de microscopia ótica e eletrónica.

-Saber a técnica fundamental de preparação de material biológico para TEM.

-Saber e trabalhar em grupo e saber e debater temas, procedimentos e resultados.

-Aprender a ser disciplinado, educado e respeitador em relação à Instituição, docentes e colegas.

Competências gerais a adquirir:

Aptidões a adquirir:

1-pensamento crítico e capacidade de resolução de problemas.

2-colaboração, agilidade e adaptabilidade.

3-iniciativa e empreendedorismo.

4-boa comunicação oral e escrita.

5-capacidade de aceder à informação e analisá-la.

6-curiosidade e imaginação.

O que o mercado de trabalho exige de um licenciado:

-Que domine os conhecimentos básicos de biologia celular.

-Que seja autónomo.

-Tenha a capacidade contínua de aprender coisas novas.

-Que seja capaz de produzir conhecimento.

-Que seja capaz de interagir com pessoas, por vezes, de múltiplas nacionalidades e backgrounds culturais diferentes.

-Que seja capaz de se adaptar a novas situações.

Modo de trabalho

Presencial

Pré-requisitos (conhecimentos prévios) e co-requisitos (conhecimentos simultâneos)

Necessita-se que o estudante tenha conhecimentos básicos de biologia celular do nível do 10º-12º ano do Liceu.

Programa

TEMAS TEÓRICOS:

1-Apresentação da Unidade Curricular.

2-Microscopia. Diferentes tipos de microscópios. Técnicas de microscopia. Nova instrumentação para análise de células.

3/4-Morfologia da célula

5-Estrutura da membrana celular.

6-Transporte membranar de pequenas moléculas.

7--Ácidos nucleicos. Cromatina. Cromossomas.

8-Replicação do DNA. Reparação do DNA.

9-Transcrição: mRNA, tRNA, rRNA, snRNA. Processamento nuclear do RNA.

10-Tradução.

11-noncoding RNAs.

12-Poros nucleares. Transporte nucleo-citoplasmático.

13-Ciclo celular.

14-Mitose. Meiose.

15-Retículo endoplasmático. Processamento de proteínas e lípidos. Reservas de cálcio.

16-Aparelho de Golgi. Processamento de proteínas e lípidos.

17-Lisossomas. Endocitose. Exocitose. Autofagia.

18-Peroxissomas.

19-Mitocôndrias. Substâncias de reserva.

16-Citoesqueleto-I: microtúbulos, cílios, flagelos.

20/21-Citoesqueleto-II: microfilamentos, microvilosidades, estereocílios, filamentos intermédios.

22-Junções intercelulares. Adesão celular.

23-Matriz extracelular. Lâmina basal.

24-Mobilidade celular.

25-Contração celular. Músculo esquelético estriado, músculo cardíaco estriado, músculo liso.

26-Sinalização celular.

27-Morte celular programada.

28-Fertilização, desenvolvimento embrionário preimplantação.

TEMAS PRÁTICOS:

1-Apresentação

2-Microscópio ótico de fundo claro.

Estrutura. Ótica

Execução:

Aprendizagem em autonomia do uso do microscópio ótico de fundo claro (pele rato)

3-Preparações extemporâneas

Execução:

Osmose em eritrócitos (sangue de cão)

Esfregaço sanguíneo (sangue de cão)

4-Metodologia de processamento de material biológico para microscopia ótica

5-Colorações topográficas

Execução:

Microtomia e colagem (rato)

Coloração pela Hematoxilina-Eosina (rato)

6- Metodologia de processamento de material biológico para microscopia eletrónica de transmissão

7-Microscopia eletrónica de transmissão

Execução:

Ultramicrotomia

Visualização da célula ao microscópio eletrónica de transmissão

8-Mitose e Meiose

Execução:

Determinação do índice mitótico

Ovogénese e espermatogénese

9-Especializações da membrana

Execução:

Microvilosidades (intestino delgado de rato)

Estereocílios (epidídimo de rato)

Cílios (traqueia de rato) (trompa de Falópio de rato)

Flagelo (espermatozoides de cão e cavalo)

10-Histoquímica:

Execução:

Substâncias de reserva:

Glicogénio (fígado de rato) - Reação do PAS

Gotículas lipídicas (fígado de rato) - Coloração pelo Negro do Sudão

Deteção de DNA:

Heterocromatina (fígado de rato) - Reação de Feulgen-Rossenbeck

Deteção de polissacarídeos neutros:

Células caliciformes (intestino delgado de rato) - Reação do PAS

Deteção de polissacarídeos ácidos:

Células caliciformes (intestino delgado de rato) - coloração pelo Azul de Alcian

-Deteção de proteínas:

Pâncreas exócrino (fígado de rato) - Reação do DMAB-Nitrito

11/12-Atlas de ME

Execução:

Análise de imagens de microscopia eletrónica de transmissão. Diagnóstico de organelos e estruturas celulares

13-Apoptose.

Execução:

Deteção de apoptose por microscopia de fluorescência usando a técnica TUNEL. Secções de parafina de gânglios linfáticos com Linfoma humano e de cão. Atlas de imagens de TEM para observação a nível ultrastrutural de células em apoptose.

14-Apresentações dos trabalhos dos Estudantes

Bibliografia Obrigatória

Bruce Alberts; Molecular biology of the cell. ISBN: 978-0-8153-4464-3

Observações Bibliográficas

Os estudantes dispõem na plataforma Moodle, como apoio ao estudo de modo a mais facilmente integrarem o conhecimento, todos os PP, vários Textos de apoio, Atlas, Vídeos e Protocolos experimentais.

Métodos de ensino e atividades de aprendizagem

Aulas Teóricas:

-Exposição da matéria com apoio de meios audiovisuais dinâmicos.

-Ensino Presencial (B-learning em situações de exceção)

-Plataforma Sigarra / Moodle- Apresentações Teóricas e textos de apoio.

-Outras fontes de ensino: Biblioteca, livros, textos, revistas científicas.

-Salas de ensino equipadas com quadros brancos e projeção vídeo ligado a computador com internet.

 -AS AULAS SÃO DINÂMICAS, PERMITINDO INTERAÇÃO COM OS ESTUDANTES.

 

Aulas Práticas:

-Aquisição de autonomia no manejo do microscópio ótico de fundo claro.

-Aquisição de noções básicas de processamento de material biológico para microscopia ótica e eletrónica.

-Aquisição de competência na identificação da ultrastrutura dos componentes celulares em microscopia ótica e eletrónica.

-Aquisição de competências na execução de técnicas experimentais (osmose; esfregaço sanguíneo; coloração Hematoxilina-Eosina; detecção da apoptose por imunocitoquimica em células cancerígenas com uso do microscópio de fluorescência).

-Ensino Presencial / B-learning (situações de exceção)

-Plataforma Sigarra / Moodle- Apresentações Práticas e textos de apoio.

-Outras fontes de ensino: Biblioteca de preparações histológicas; Atlas de microscopia ótica, histoquímica e microscopia eletrónica.

-Laboratório moderno com todo o equipamento necessário de vídeo-ensino e para execução dos trabalhos experimentais.

-Sala de aulas equipado com 24 microscópios óticos Zeiss e um microscópio de fluorescência Leitz.

 -AS AULAS SÃO EXPERIMENTAIS, PERSONALIZADAS, PERMITINDO INTEGRAÇÃO COM O CONHECIMENTO TEÓRICO, DISCUSSÃO INTERATIVA E TRABALHO DE GRUPO, HABILITANDO PARA O USO DE INSTRUMENTOS E DE IDENTIFICADORES DE MODO AUTÓNOMO.

Palavras Chave

Ciências Naturais
Ciências da Saúde

Tipo de avaliação

Avaliação distribuída com exame final

Componentes de Avaliação

Designação	Peso (%)
Participação presencial	20,00
Exame	80,00
Total:	100,00

Componentes de Ocupação

Designação	Tempo (Horas)
Estudo autónomo	38,00
Frequência das aulas	56,00
Trabalho de investigação	14,00
Total:	108,00

Obtenção de frequência

OBTENÇÃO DE FREQUÊNCIA

-Avaliação contínua e Avaliação Final.

-Exame Final e Exame de Recurso (Janeiro-Fevereiro).

-Nas aulas Práticas, os alunos não podem exceder em 25% o número de faltas não oficialmente justificadas (normas segundo a Lei).

-O aluno que exceder este número fica automaticamente reprovado.

-A frequência das aulas Práticas não entra para efeitos de avaliação.

Fórmula de cálculo da classificação final

CÁLCULO DA CLASSIFICAÇÃO FINAL:

1-Exame final.:

1.1-Perguntas de escolha múltipla sobre a matéria das aulas teóricas. Cada questão apresenta 5 alternativas, das quais só uma está incorreta. O aluno deverá indicar a frase incorreta. O aluno só pode assinalar uma resposta. As respostas erradas não descontam.

60% do Total-12 valores.

1.2-Identificação de imagens

Identificação de imagens de microscopia ótica e eletrónica das estruturas e organelos celulares. Num conjunto de imagens estão identificados esses elementos. Para cada estrutura celular assinalada existem 3 alternativas, das quais só uma está correta. O aluno deverá indicar a alínea correta. O aluno só pode assinalar uma resposta. As respostas erradas não descontam

20% do Total -4 valores.

1.3-Avaliação contínua

20% do Total -4 valores.

Cada Turma é dividida em pequenos grupos (2-5 alunos). Cada Grupo escolhe livremente um caso clínico veterinário, pessoal ou de uma clínica/hospital, que deverá ser apresentado e avaliado pelos alunos da Turma na última semana de aulas (Janeiro). Os detalhes do trabalho encontram-se num documento inserido na Pasta Avaliação Contínua.

Na aula das Apresentações, cada grupo efetuará a sua apresentação de 10 min. No início da aula o Regente distribuirá uma folha de avaliação anónima, que é entregue no final da aula (dobrado em quatro). A avaliação decorrerá sob proteção de anonimato. É muito importante que os alunos sejam justos e honestos para com os colegas nas avaliações.

A avaliação é feita pelo Conteúdo (0-2 valores) e Apresentação (0-2 valores).

2-Classificação final:

Exame final + Análise de imagens + Avaliação contínua

Provas e trabalhos especiais

PROVAS E TRABALHOS ESPECIAIS: Nenhum

Trabalho de estágio/projeto

TRABALHO DE ESTÁGIO/PROJETO: Nenhum

Avaliação especial (TE, DA, ...)

AVALIAÇÃO ESPECIAL:

A definir pela Direção do ICBAS-UP

Melhoria de classificação

MELHORIA DE CLASSIFICAÇÃO:

Só pode ser efetuado no exame de Recurso

Observações

OBSERVAÇÕES:

HORÁRIO DE DÚVIDAS:

Laboratório de Biologia Celular. Os alunos deverão contactar os Docentes que ministraram cada matéria em causa:

Mário Sousa: msousa@icbas.up.pt

Rosália Sá: rmsa@icbas.up.pt

Jorge Oliveira: jmoliveira@ibmc.up.pt

OBSERVAÇÕES CAPITAIS:

-OS ALUNOS TÊM DE USAR BATA BRANCA EM TODAS AS AULAS PRÁTICAS.

-A PRIMEIRA AULA PRÁTICA É OBRIGATÓRIA.

-As aulas teóricas não são de assistência obrigatória. os alunos devem ter um comportamento exemplar mantendo-se em silêncio. Nenhum abuso de falta de educação superior será tolerado. No final de cada apresentação os alunos disporão de 5-10 min para dúvidas com o Docente.

 

REGENTE:

-Mário Sousa, Médico, Professor Catedrático, Departamento de Microscopia, Laboratório de Biologia Celular (Diretor), ICBAS-UP.

 

EQUIPA DOCENTE:

 -Mário Sousa, MD, PhD, Professor Catedrático (Regente)

Lic. em Medicina (ICBAS/CHUP), doutoramento (ICBAS), Pós-doutoramento (INSERM, Clamart, França), Subespecialidade em Medicina da Reprodução Laboratorial (American Hospital of Paris, França)

Email: msousa@icbas.up.pt

ORCID ID: 0000-0002-3009-3290

CIENCIA ID: 5118-4AC0-9709

-Rosália Sá, PhD, Professora Auxiliar

Lic. em Biologia (Universidade de Aveiro), doutoramento (ICBAS)

Email: rmsa@icbas.up.pt

ORCID ID: 0000-0002-6551-3822

CIENCIA ID: DB18-92C4-7A18

-Jorge Oliveira, PhD, Professor Auxiliar convidado, Geneticista molecular clínico sénior, Responsável Técnico-Científico, Diretor Técnico do Laboratório de Genética Médica, GPPP/IBMC/i3S

Lic. em Biologia (Universidade de Aveiro, MSc (Universidade do Minho), doutoramento (ICBAS)

Email: jmoliveira@ibmc.up.pt

ORCID ID: 0000-0003-3924-6385

CIENCIA ID: 0C11-7E7E-376F

EQUIPA TÉCNICA:

-Elsa Oliveira, BSc, Técnica Superior, Técnica Especialista de 1ªclasse de Anatomia Patológica, Citológica e Tanatológica da Área de Diagnóstico e Terapêutica, Licenciatura em Anatomia Patológica, Citológica e Tanatológica da Área de Diagnóstico e Terapêutica

Email: emoliveira@icbas.up.pt

ORCID ID: 0000-0002-8482-5047

CIENCIA ID: A711-3A06-28FF

-Telma Oliveira, MSc, Técnica Superior, Licenciatura em Anatomia Patológica, Citológica e Tanatológica da Área de Diagnóstico e Terapêutica. Mestrado em Técnicas Laboratoriais de Biopatologia (Escola Superior de Saúde do Porto)

Email: telmah_18@hotmail.com

ORCID ID: 0009-0006-1258-5941

CIENCIA ID: 4810-D233-9D11

-Joana Saramago, PhD, Técnica Superior, Licenciada em Biologia (FCUP), Mestrado em Biologia Molecular e Celular (FCUP), Doutoramento em Ciências Biomédicas (ICBAS / IBMC/i3S)

Email: jfsaramago@icbas.up.pt

ORCID ID: 0000-0002-8190-2617

CIENCIA ID: 5717-8EE4-9F4E

 

-BIBLIOGRAFIA OBRIGATÓRIA:

1-Molecular Biology of the Cell (2022) Alberts B et al. Garland Edition. 7th Edition.

Identifiers: LCCN 2021049376 | ISBN 9780393884821 (hardcover) | ISBN 9780393884630 (epub)

2-Programa de Biologia Celular (2024/2025). Moodle-ICBAS-UP. Consultar obrigatoriamente as Pastas das Aulas Teóricas, Aulas Práticas e Pasta Geral, onde os Alunos encontrarão os Power-points das aulas, Textos de apoio, Atlas, Vídeos e Protocolos das aulas Práticas.

-BIBLIOGRAFIA COMPLEMENTAR:

1-Molecular Cell Biology (2016) Lodish H et al. W.H. Freeman and Company. 8th Edition.

ISBN-13: 978-1319067748 / ISBN-10: 1319067743

 

2-The Cell: A Molecular Approach (2015) G Cooper and R Hausman. ASM Press Edition. 8th Edition.

 

3- Biologia Celular e Molecular (2012) Azevedo C e Sunkel CE. Lidel Edition. 5ª Edição.

ISBN:978-972-757-692-0 / ISBN: 9781605352909

 

4-Reprodução humana masculina. Princípios fundamentais (2015). Margarida Fardilha, Joana Vieira da Silva, Miguel Conde (Eds). ARC Publishing e Editores.

ISBN: 978-989-98599-3-7

 

5-Biblioteca ICBAS/FFUP: Medline, PubMed, Net, Livros, Atlas e Revistas científicas.