Biologia Celular

Código:

MV112

Sigla:

BC

Áreas Científicas
Classificação	Área Científica
OFICIAL	Ciências Básicas

Ocorrência: 2011/2012 - 1S

Ativa?	Sim
Unidade Responsável:	Laboratório de Biologia Celular
Curso/CE Responsável:	Mestrado Integrado em Medicina Veterinária

Ciclos de Estudo/Cursos

Sigla	Nº de Estudantes	Plano de Estudos	Anos Curriculares	Créditos UCN	Créditos ECTS	Horas de Contacto	Horas Totais
MIMV	94	Plano 2007 a 2017	1	-	4	60	108

Língua de trabalho

Português

Objetivos

No final do semestre, o aluno deverá possuir os seguintes conhecimentos, competências e atitudes:
-noções gerais e específicas da estrutura e função dos diferentes componentes celulares.
-saber identificar todos os organelos e estruturas celulares em microscopia óptica e electrónica de transmissão (TEM).
-saber utilizar o microscópio óptico e o microscópio de fluorescência.
-saber realizar e interpretar diferentes preparações de material a fresco e processado para microscopia óptica, incluindo histoquímica e imunohistoquímica.
-noções gerais sobre diferentes técnicas de microscopia óptica e electrónica.
-saber a técnica fundamental de preparação de material biológico para TEM.
-saber e trabalhar em grupo e saber e debater temas, procedimentos e resultados.
-aprender a ser disciplinado, educado e respeitador em relação à Instituição, docentes e colegas.

Programa

TEMAS TEÓRICOS
-Evolução e diversidade celular.
-Microscópios, técnicas de microscopia e outros meios de estudo da célula.
-Membrana celular: composição, estrutura e funções.
-Membrana celular: transporte membranar de pequenas células.
-Citosqueleto: microtúbulos, cílios e flagelos.
-Citosqueleto: microfilamentos e filamentos intermédios.
-Ácidos nucleicos: composição e estrutura. Replicação e reparação.
-Ácidos nucleicos: transcrição e splicing.
-Nucléolo: síntese e processamento dos RNA ribossómicos.
-Ácidos nucleicos: Ribossomas e síntese proteica (Tradução).
-Núcleo celular: Invólucro nuclear e respectivos poros, lâmina nuclear, transporte núcleo-citoplasmático.
-Mitose, Meiose. Mecanismos, estrutura e funções.
-Ciclo celular. Mecanismos, estrutura e funções.
-Retículo endoplasmático: estrutura e funções. Processamento de proteínas e lípidos.
-Complexo de Golgi: estrutura e funções; exocitose.
-Lisossomas: estrutura e funções; endocitose.
-Mitocôndrias, Substâncias de reserva: estrutura e funções.
-Peroxissomas: estrutura e funções.
-Junções intercelulares, Adesão celular, Lâmina basal: estrutura e funções.
-Morte Celular Programada: estrutura e funções.
-Mobilidade Celular, Sinalização celular: estrutura e funções.

TEMAS PRÁTICOS
-Utilização do microscópio óptico de fundo claro. Focagem, Resolução, Morfologia microscópica (pele humana).
-Preparações extemporâneas. Observação de movimentos de ciclose em Nitella sp (alga verde; retículo endoplasmático e outras estruturas vesiculares) e em Elodea sp (Planta vascular, folha verde; cloroplastos). Osmose: epiderme de Allium cepa (cebola).
-Processamento de material biológico para microscopia óptica. Inclui vídeo e processamento.
-Colorações topográficas (hematoxilina e eosina, He-Eo): fígado de rato.
-Processamento de material biológico para microscopia electrónica de transmissão. Inclui vídeo. Visita aos ultramicrótomos com visualização dos cortes semifinos, ultrafinos e processamento das grelhas para TEM; operação e observação ao TEM de células, estruturas e organelos celulares.
-Histoquímica:
Detecção de DNA (Feulgen-Rossenbeck) em fígado de rato; atlas de imagens de TEM para observação a nível ultrastrutural de ácidos nucleicos.
Detecção de polissacáridos: glicogénio (fígado de rato); polissacáridos básicos (PAS: células caliciformes, duodeno rato); polissacáridos ácidos (Azul de alcian: células caliciformes, duodeno rato); atlas de imagens de TEM para observação a nível ultrastrutural de polissacáridos.
-Mitose (Allium cepa) e Meiose (ovário e testículo de rato).
- Histoquímica.
Detecção de proteínas (DMAB-Nitrito) no pâncreas exócrino do rato; atlas de imagens de TEM para observação a nível ultrastrutural de proteínas.
Detecção de lípidos (Negro de Sudão) na pele de rato; atlas de imagens de TEM para observação a nível ultrastrutural de gotículas lipídicas.
-Especializações celulares: microvilosidades (duodeno); estereocílios (epididímo); cílios (traqueia, trompa de Falópio), flagelos (esfregaço de sémen), desmosomas focais (pele); atlas de imagens de TEM para observação a nível ultrastrutural das especializações celulares e das junções intercelulares.
-Consulta de Atlas para observação de todos os organelos e estruturas celulares em imagens de microscopia electrónica de transmissão. Núcleo, Citoplasma, Especializações da membrana, Junções intercelulares, Citosqueleto, Técnicas especiais.
-Apoptose. Reacção de detecção por microscopia de fluorescência usando a técnica TUNEL. Secções de parafina de gânglios linfáticos com Linfoma humano e de cão. Atlas de imagens de TEM para observação a nível ultrastrutural de células em apoptose.
-Exame de auto-avaliação (imagens TEM).

Bibliografia Obrigatória

Azevedo Carlos 340; Biologia celular e molecular. ISBN: 972-757-354-1
Alberts Bruce; Molecular biology of the cell. ISBN: 978-0-8153-4105-5
Cooper G and Hausman R ; The Cell: A Molecular Approach , ASM Press Edition, 2006

Bibliografia Complementar

Cooper G and Hausman R (4th ed); The Cell: A Molecular Approach (2006) , ASM Press Edition. , 2006

Métodos de ensino e atividades de aprendizagem

Aulas teóricas
-Exposição da matéria com apoio de meios audiovisuais dinâmicos.
-Salas de ensino equipadas com quadros broncos e projecção vídeo ligado a computador com internet.
-Variados meios de aprendizagem: Biblioteca, livros, textos, revistas científicas, bases de dados e e-learning.
-Plataforma SIGARRA online (UP) com todas as Apresentações Teóricas, bem como textos e imagens/atlas suplementares.

Aulas práticas
-Exposição da matéria, aquisição de autonomia no manejo do microscópio óptico de fundo claro, execução de protocolos práticos experimentais (ensino personalizado e trabalho em grupo), observação de células e tecidos em microscopia óptica, e microscopia de fluorescência, observação de imagens de microscopia electrónica de transmissão (TEM).
-Laboratório moderno com todo o equipamento necessário à execução dos trabalhos experimentais e de observação ao TEM.
-Sala de aulas equipado com 24 microscópios ópticos Zeiss e um microscópio de fluorescência Leitz.
-Variados meios de aprendizagem: protocolos experimentais.
-Biblioteca de preparações histológicas.
-Atlas de microscopia óptica, histoquímica e TEM.
-Plataforma SIGARRA online (UP) com todas as Apresentações Práticas, bem como textos e imagens/atlas suplementares.

Tipo de avaliação

Avaliação por exame final

Componentes de Avaliação

Descrição	Tipo	Tempo (Horas)	Peso (%)	Data Conclusão
Participação presencial (estimativa)	Participação presencial	0,00
Aulas Teóricas e Práticas	Participação presencial	48,00		2011-06-11
Treino no Trabalho experimental nas Aulas Práticas	Trabalho laboratorial	10,00		2012-02-11
Exame Final (teórico e prático)	Exame	1,50		2012-02-11
	Total:	-	0,00

Componentes de Ocupação

Descrição	Tipo	Tempo (Horas)	Data Conclusão
Preparação para Exame Teórico	Estudo autónomo	48,5	2012-02-11
	Total:	48,50

Obtenção de frequência

Os alunos não podem exceder o número de faltas correspondente a 25% das aulas práticas.

Fórmula de cálculo da classificação final

Exame final: 90 minutos, 20 valores
-50 Perguntas curtas de escolha múltipla. Cada questão apresenta 5 alternativas, das quais só uma está totalmente incorrecta. Só pode assinalar uma resposta. As respostas erradas não descontam. Cada uma vale 0.28 valores, num total de 14 valores.
-Na folha de exame, as últimas páginas são dedicadas à identificação de imagens de microscopia óptica e electrónica das estruturas e organelos celulares ensinados. Num conjunto de imagens estão identificados 25 desses elementos. Os alunos têm de os identificar, escrevendo por extenso. Não descontam as respostas erradas. Cada uma vale 0.24 valores, num total de 6 valores.

Observações

REGENTE
Mário Sousa
Departamento de Microscopia, Laboratório de Biologia Celular, ICBAS-UP

DOCENTES
Prof. Doutor Mário Sousa, MD, PhD, Professor Catedrático
Dra. Rosália Sá, Assistente
Prof. Doutor Alexandre Lobo da Cunha, PhD, Professor Catedrático
Prof. Doutora Beatriz Porto, PhD, Professora Auxiliar
Prof. Doutor Carlos Azevedo, PhD, Professor Catedrático, Jubilado, Convidado
Prof. Doutora Isabel Malheiro, PhD, Professora Associada, Aposentada, Convidada

TÉCNICOS
-Elsa Oliveira, Técnica Especialista de 1ªclasse de Anatomia Patológica, Citológica e Tanatológica da Área de Diagnóstico e Terapêutica
-Ângela Alves, Assistente técnica de ensino e investigação

Horário de Dúvidas:
Laboratório de Biologia Celular
2ªF: 14-15h; 4ªF: 13-14h, 5ªF: 14-15h