| Código: | BIOL1019 | Sigla: | BIOL1019 |
| Áreas Científicas | |
|---|---|
| Classificação | Área Científica |
| OFICIAL | Biologia |
| Ativa? | Sim |
| Unidade Responsável: | Departamento de Biologia |
| Curso/CE Responsável: | Licenciatura em Biologia |
| Sigla | Nº de Estudantes | Plano de Estudos | Anos Curriculares | Créditos UCN | Créditos ECTS | Horas de Contacto | Horas Totais |
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| L:B | 183 | Plano de Estudos Oficial | 1 | - | 6 | 48 | 162 |
| Docente | Responsabilidade |
|---|---|
| Paula Maria Sequeira Tamagnini Barbosa Oxelfelt | Regente |
| Teórica: | 1,85 |
| Práticas Laboratoriais: | 1,85 |
| Tipo | Docente | Turmas | Horas |
|---|---|---|---|
| Teórica | Totais | 1 | 1,85 |
| Mariana Pereira de Sousa de Santiago Sottomayor | 0,615 | ||
| Paula Maria Sequeira Tamagnini Barbosa Oxelfelt | 0,615 | ||
| Luís Gustavo de Carvalho Pereira | 0,615 | ||
| Práticas Laboratoriais | Totais | 9 | 16,65 |
| Diana Filipa Viana Moreira | 3,692 | ||
| Maria Isabel de Pinho Pessoa de Amorim | 3,692 | ||
| Ana Maria Gonçalves Séneca Correia Cardoso | 0,923 | ||
| Luís Gustavo de Carvalho Pereira | 0,923 | ||
| Paula Maria Sequeira Tamagnini Barbosa Oxelfelt | 1,85 | ||
| Paulo Miguel Nunes de Oliveira | 3,692 | ||
| Maria José Cardoso Oliveira | 1,846 |
A Unidade Curricular de Biologia Molecular e Celular I tem como objetivos a aquisição de conhecimento funcional* sobre:
i) as propriedades fundamentais da química da vida
ii) as características gerais da base celular da vida
iii) o fluxo molecular de informação que mantém a vida, do gene à proteína, incluindo:
- a estrutura, organização e replicação do material genético
- o tipo de informação contida no genoma
- os mecanismos de transcrição e tradução
- o modo como esses processos são regulados
- a estrutura e função de proteínas
iv) as principais estratégias e ferramentas que permitem a construção do conhecimento nas áreas da biologia molecular e bioquímica
v) as aplicações principais e inovadoras das metodologias da biologia molecular e bioquímica
* conhecimento funcional - capacidade de descrever, interpretar, analisar, sintetizar, aplicar e avaliar de forma crítica
No final da Unidade Curricular BMC I, os estudantes deverão ter adquirido conhecimento e competências para:
PROGRAMA TEÓRICO
Introdução. As bases moleculares da biologia celular. Atividade celular: da função biológica ao gene. Propriedades universais das células. Biomacromoléculas.
O DNA. Estrutura e propriedades dos nucleótidos e dos ácidos nucleicos. Duplicação do DNA. Mecanismos de duplicação em procariontes e eucariontes. Mutações e agentes mutagénicos. Danos mais comuns no DNA e respetivos mecanismos de reparação.
Do DNA ao mRNA. Estrutura de um gene. Transcrição. Processamento do RNA mensageiro. Regulação da expressão de genes em procariontes e eucariontes. Epigenética.
Do RNA à proteína. Aminoácidos e estrutura primária das proteínas. Tradução/síntese proteica e o código genético universal. Modificação química e processamento das proteínas pós-tradução. Estrutura tridimensional (3D) das proteínas - estrutura secundária, terciária e quaternária, domínios. Estabelecimento da conformação 3D das proteínas – os chaperones. Ciclo de vida de uma proteína – a via da ubiquitina.
Da proteína à função. Relação estrutura-função. Locais de ligação e ligandos. Exemplos: enzimas e anticorpos. Regulação da função das proteínas: regulação alostérica, regulação por modificações pós-tradução e por processamento.
Estudo das proteínas. Fracionamento celular. Purificação de proteínas. Cromatografia líquida em coluna. Electroforese. SDS PAGE e Western blotting. Estudos proteómicos usando espectrometria de massa. Caracterização da estrutura 3D de proteínas: difracção de raios X, ressonância nuclear magnética e microscopia electrónica.
Vírus. Características gerais. Tipos de partículas virais. Diversidade do material genético viral. Funções de genes virais. Ciclo de vida típico de um vírus. Ciclo de vida de um retrovírus. Os ciclos lítico e lisogénico dos bacteriófagos. Heterogeneidade genética das populações virais e respetivas implicações evolutivas e adaptativas. Deriva ("drift") e mudança ("shift") antigénicas do vírus da gripe. Recriação laboratorial de vírus biologicamente activos.
Principais técnicas usadas em Biologia Molecular. Enzimas de restrição e DNA ligase. Tecnologia de DNA recombinante: vetores de clonagem. vetores e sistemas de expressão. Genes repórter. Amplificação de DNA pela reacção em cadeia da polimerase (PCR). Complementaridade e hibridação de ácidos nucleicos. Análise transcricional. Técnicas de sequenciação. Sequenciação de genomas e conhecimentos derivados da análise de genomas. Sequenciação de RNA. Introdução à biologia sintética. Organismos geneticamente modificados (OGMs).
A utilização de organismos modelo. O racional dos modelos biológicos. Principais modelos de mircroorganismos, plantas e animais, e respetivas ferramentas e estratégias. Casos de estudo.
A revolução genómica. O poder da genómica para dar resposta às perguntas da função biológica e evolução da vida. Aplicações da genómica, casos de estudo e questões éticas.
PROGRAMA PRÁTICO
Introdução ao laboratório, cuidados básicos de segurança e técnicas de biologia molecular. Isolamento e quantificação de DNA. Corte de DNA com enzimas de restrição. Separação de fragmentos de DNA por eletroforese em gel de agarose e mapas de restrição.
Amplificação de um fragmento do gene da proteína verde fluorescente (GFP), utilizando a reação em cadeia da polimerase (PCR).
Obtenção de células competentes e transformação de Escherichia coli com o plasmídio pGLO. Regulação do operão ara e expressão da GFP em E. coli. Purificação da GFP utilizando cromatografia de interação hidrofóbica.
Aulas teóricas globalmente expositivas com recurso a apresentações power point, vídeos, e apoiadas em forte interacção com os alunos. Serão utilizados questionários formativos em momentos chave para auto regulação por parte do aluno, e diagnóstico de possíveis medidas de remediação a adoptar por parte dos professores.
Os alunos são orientados e incentivados a consultarem a bibliografia e os restantes recursos colocados à disposição (material das aulas, sites, vídeos e artigos criteriosamente selecionados).
Recorre-se a vários “estudos de caso” como ferramenta que permite aplicar e consolidar os conhecimentos, assim como estimular o interesse e curiosidade dos alunos.
Aulas práticas de índole laboratorial com planeamento experimental, realização de experiências e discussão de resultados. É fornecido aos estudantes um “Guia dos Trabalhos Práticos” contendo os procedimentos experimentais, quesquestionários formativos, bem como o programa e a calendarização das aulas práticas.
| Designação | Peso (%) |
|---|---|
| Teste | 33,00 |
| Exame | 67,00 |
| Total: | 100,00 |
| Designação | Tempo (Horas) |
|---|---|
| Estudo autónomo | 114,00 |
| Frequência das aulas | 48,00 |
| Total: | 162,00 |
Presença em 75% das aulas práticas.
Estudantes trabalhadores: realização de 2/3 dos trabalhos práticos.
Será realizado um teste, no final do semestre, sobre a matéria das aulas práticas – TP
O exame da Época normal incidirá exclusivamente sobre a matéria das aulas teóricas - T
Nota mínima em qualquer das componentes: igual ou superior a 7,0 valores (em 20)
Classificação final = (2x T+ TP) / 3
Em caso de não-aprovação é possível realizar uma prova global (T e TP) na data marcada para o exame da época de recurso.
Trabalhadores estudantes: o teste poderá ser substituído por uma prova global em data a combinar com os docentes.
A avaliação para melhoria de nota pode ser feita até à época de recurso do ano lectivo subsequente àquela em que o estudante obteve aprovação.