| Código: | RM03 | Sigla: | TABCMCM |
| Áreas Científicas | |
|---|---|
| Classificação | Área Científica |
| OFICIAL | Ciências do Mar |
| Ativa? | Sim |
| Unidade Responsável: | Microscopia |
| Curso/CE Responsável: | Mestrado em Ciências do Mar - Recursos Marinhos |
| Sigla | Nº de Estudantes | Plano de Estudos | Anos Curriculares | Créditos UCN | Créditos ECTS | Horas de Contacto | Horas Totais |
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| MCMRM | 17 | Plano Oficial 2018 | 1 | - | 5 | 50 | 135 |
Familiarizar mais os estudantes com várias técnicas utilizadas para analisar amostras biológicas em biologia celular e molecular, com ênfase em animais aquáticos.
Recordar e esclarecer os estudantes sobre os princípios teóricos que estão na base de cada técnica, bem como, fornecer protocolos e exemplificar algumas das suas aplicações mais comuns em biologia.
Possibilitar a aprendizagem recorrente da experiência do “saber fazer” no que diz respeito a técnicas muito usadas em biologia celular e molecular.
No final das atividades letivas, o estudante deverá mostrar que possui conhecimento, compreensão, capacidade de execução e competência nas áreas relativas a várias técnicas, citológicas, histológicas (microscopia, ótica, eletrónica e de fluorescência), de citometria, de cultura celular e ainda moleculares (como seja desenho de primers e qtRT-PCR).
Um dos resultados da aprendizagem é também aumentar a experiência de trabalhar em grupo para a resolução de problemas.
NECROPSIA, RECOLHA, PROCESSAMENTO E ANÁLISE DE AMOSTRAS BIOLÓGICAS.
CULTURA DE CÉLULAS: Introdução aos princípios básicos. Equipamento. Preparação dos reagentes e do material. Culturas primárias. Subculturas e linhas celulares. Contaminação. Criopreservação. Quantificação. Aplicações. Culturas 2D vs. 3D.
PROCESSAMENTO PARA MICROSCOPIA ÓTICA: DA RECOLHA À LÂMINA: Introdução. Dissecação e recolha de amostras. Criofixação. Fixação e descalcificação. Desidratação. Diafanização. Impregnação e inclusão. Corte.
RECOLHA DE AMOSTRAS E PROCESSAMENTO PARA MICROSCOPIA ELETRÓNICA: Introdução. Dissecação e recolha de amostras. Processamento do tecido. Ultramicrotomia. Coloração e contrastação. Criotécnicas. Observação ao microscópio. Aplicações.
TÉCNICAS DE COLORAÇÃO EM MICROSCOPIA ÓTICA: Introdução à teoria da coloração. Descrição de algumas das técnicas mais utilizadas em histologia: Hematéina & Eosina. Impregnação argêntica: método de Bielschowsky's para fibras nervosas e axónios; Método de Gomori para fibras reticulares. Tricrómio de Masson para fibras de colagénio. Colorações para lípidos. Colorações de Nissl para o tecido nervoso. Coloração de Weigert para fibras elásticas.
HISTOQUÍMICA: Introdução. Preparação do tecido. Métodos histoquímicos. Análise qualitativa versus quantitativa. Aplicações.
IMUNOHISTOQUÍMICA: Introdução. Produção de anticorpos. Preparação do tecido. Método direto e indireto. Visualização dos produtos finais da reação (microscopia ótica e eletrónica). Análise qualitativa versus quantitativa. Aplicações.
IMUNOFLUORESCÊNCIA: Introdução. Antigénios. Métodos para preservação dos antigénios. Seleção dos anticorpos. Procedimento. Aplicações. Introdução à microscopia confocal.
TÉCNICAS CITOLÓGICAS: Introdução. Princípios gerais da citologia. Manuseamento das amostras. Preparação das amostras. Coloração das amostras citológicas. Observação citológica. Aplicações.
TESTES DE GENO/CITOTOXICIDADE: O ensaio do cometa.
ESTEREOLOGIA: Introdução. A importância da quantificação. Parâmetros-alvo. Medidas em órgãos, células e organelos.
INTRODUÇÃO AOS MÉTODOS MOLECULARES: DNA. RNA. Transcrição. Tradução. Código genético. Proteína.
HIBRIDIZAÇÃO IN-SITU: Introdução.Tipos de sondas. Preparação do tecido e pré-tratamento da amostra. Revelação dos híbridos. Contrastação e modos de observação. Análise qualitativa versus quantitativa. Aplicações.
CITOMETRIA DE FLUXO: Pincípios e aplicações.
WESTERN BLOT: técnica, teoria, prática e problemas.
CONCEITOS TEÓRICOS SOBRE BIOLOGIA MOLECULAR: Estrutura do gene, exons, introns, promotores, mecanismos reguladores. Evolução molecular, homologia/analogia. Aplicações de biologia molecular - exemplos.
BIOINFORMÁTICA/ LABORATÓRIO RNA: Bioinformática: Notas introdutórias; GenBank e Ensembl; Recursos genómicos; Alinhamentos, Regiões conservadas; Filogenia; Exercício prático. Laboratório RNA: Notas introdutórias; Extração do RNA, concentração, avaliação da qualidade, síntese de cDNA.
PCR DE TEMPO REAL: Notas introdutórias sobre os princípios básicos da técnica. Exercício laboratorial com o RT-PCR. Discussão dos resultados. Alternativas: métodos avançados de expressão molecular.
TÉCNICAS HEMATOLÓGICAS (dependente do tempo letivo disponível): Breve introdução aos princípios e aplicações.
FIM
Aulas expositivas | Aulas Práticas.
| Designação | Peso (%) |
|---|---|
| Exame | 70,00 |
| Participação presencial | 5,00 |
| Trabalho escrito | 25,00 |
| Total: | 100,00 |
| Designação | Tempo (Horas) |
|---|---|
| Elaboração de projeto | 2,00 |
| Estudo autónomo | 83,00 |
| Frequência das aulas | 50,00 |
| Total: | 135,00 |
Conforme a Lei e Normas em vigor na UPorto e do ICBAS.
É requerida a presença em 3/4 das aulas lecionadas.
Nota Final = Nota do Exame Final x 0,70 x + Nota do Projeto x 0,30 + Bónus
As notas de Exame e Projeto são dadas numa escala de 0 a 20 valores.
Exame Final - Teste de escolha múltipla.
Projeto - Conforme descrito em Provas e Trabalhos Especiais.
Bónus - Os estudantes que fizerem a apresentação do Projeto em Inglês (no texto escrito e na apresentação oral) terão um bónus de até 1 valor.
A classificação final é de 0 a 20 valores, arredondada à unidade.
Projeto - Apresentação oral de 1 uma página web dedicada à apresentação detalhada de uma das técnicas utilizadas durante as aulas (biologia celular ou molecular), no âmbito da sua aplicação na área das ciências do mar.
Deverá ser incluído um exemplo prático da sua aplicação, com base numa boa referência de 1 artigo original publicado em revista internacional indexada na WOS e/ou Scopus.
O trabalho é realizado em grupos de 4 a 6 estudantes (não mais do que 4 grupos). Os grupos NÃO poderão fazer projetos baseados em técnica idêntica, pelo que se terão de coordenar-se entre si.
No dia da apresentação (uma "visita guiada à página") será sorteado quem apresenta o protocolo e quem apresenta e justifica a escolha do exemplo de aplicação. Todos os elementos (e sobretudo os que não apresentaram) podem ser chamados a responder a questões relativas ao trabalho.
Nota: ultrapassar do tempo de apresentação do projeto (máximo de 15 minutos) será negativamente refletido na classificação.
Realização de novo exame final, não havendo lugar a melhoria da componente contínua (exceto se o estudante frequentar de novo a unidade, em ano letivo seguinte).
Oradores convidados: a unidade curricular pode convidar anualmente alguns oradores, apresentarem avanços em temas técnicos selecionados, além de poderem participar na lecionação prática.
A Licª. e mestre Fernanda Cristina Rodrigues Malhão, a Doutora Célia Cristina Lopes integram o grupo docente especializado.